服務(wù)熱線
18611095289
國外醫(yī)學(xué)計(jì)劃生育分冊(cè)2000年2月第19卷第1期 重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院婦產(chǎn)科(400046) 審校 摘要 胚胎著床過程的調(diào)節(jié)十分復(fù)雜,近年來細(xì)胞生長因子參與胚胎發(fā)育和著床的功能研究十分熱門,在細(xì)胞生長因子發(fā)揮作用的網(wǎng)絡(luò)中,表皮生長因子起著舉足輕重的作用,是著床過程順利完成*的因子之一。本文就表皮生長因子改善胚胎發(fā)育、啟動(dòng)胚胎著床、調(diào)節(jié)植入過程等內(nèi)容進(jìn)行簡要綜述。 關(guān)鍵詞:表皮生長因子 胚胎 發(fā)育 著床 自1962年Cohen從雄鼠頜下腺分離提純出表皮生長因子(epidermal growth factor,EGF)以來,已證明EGF對(duì)多種組織來源的細(xì)胞增殖具有明顯的促進(jìn)作用。除頜下腺以外,人體的多種組織也EGF分布,如:十二指腸的Brnners腺、含中性粘蛋白的胃粘膜細(xì)胞系、外分泌腺體以及多種腫瘤細(xì)胞等。EGF還常見于包括精液、羊水在內(nèi)的正常體液中。已經(jīng)證實(shí),在子宮內(nèi)膜、蛻膜、著床前胚胎、滋養(yǎng)層細(xì)胞等生殖組織中存在EGF和/或EGF受體(EGF-R),EGF通過自分泌、旁分泌和內(nèi)分泌途徑,單獨(dú)或通過細(xì)胞因子網(wǎng)絡(luò)(cytokine net),參與內(nèi)膜準(zhǔn)備、胚胎發(fā)育、植入過程、妊娠維持、胎盤激素合成分泌等生理過程的調(diào)節(jié)[1~3]。 一、表皮生長因子及其受體 小鼠EGF是一種含53個(gè)氨基酸的單鏈多肽,編碼小鼠EGF的信使核糖核酸(mRNA)含4 800對(duì)堿基,翻譯出的EGF前體有1217個(gè)氨基酸殘基,含數(shù)個(gè)糖基位點(diǎn),與低密度脂蛋白(LDL)序列相似,因而EGF前體可能是一種有受體功能的膜糖蛋白。成熟的EGF分子內(nèi)含3個(gè)二硫鍵,活性中心位于48~53個(gè)氨基酸殘基之間,分子量為6.045kd,等電點(diǎn)4.6,耐熱及耐胰蛋白酶、糜蛋白酶。不同種類的EGF雖然氨基酸數(shù)量和排列有差別,但存在一定的交叉反應(yīng)。,人EGF從尿液中提取出來時(shí),稱作尿抑胃素(urogastrine),其生物學(xué)活性及氨基酸序列與小鼠EGF相似。 EGF-R是一種糖蛋白,廣泛分布于哺乳動(dòng)物的上皮細(xì)胞,是一條被質(zhì)膜分為內(nèi)、外兩個(gè)區(qū)段的單一多肽鏈。EGF-R含1186個(gè)氨基酸殘基,分子量170kd,富含甘露糖。人的EGF-R基因位于第7號(hào)染色體短臂上。除細(xì)胞膜外,核內(nèi)也EGF-R分布,二者具有相同的抗原性。EGF-R的結(jié)構(gòu)和功能在不同種屬動(dòng)物中基本相似,分子進(jìn)化較保守。EGF-R本身具有蛋白激酶的活性,與配體的結(jié)合具有特異性、高親和性等特點(diǎn)[1]。EGF-R在胎盤的分布比在子宮內(nèi)膜、蛻膜等處要高1000倍,而且主要分布于合體滋養(yǎng)層[4]。 EGF家族的成員為數(shù)不少,由于它們的受體相同,因此或多或少地參與了胚胎的發(fā)育和著床的過程,研究較為廣泛而深入的是EGF,其次是轉(zhuǎn)化生長因子(TFG)和肝素結(jié)合表皮生長因子(HB-EGF),Amphiregulin、Cripto、Betacellulin、 neu以及Epiregulin與著床的調(diào)節(jié)只有少量報(bào)道[5]。 二、EGF與早期胚胎發(fā)展 著床的先決條件是胚胎的正常發(fā)育和脫透明帶。Morita[6]用EGF處理體外培養(yǎng)的胚泡,然后移植入同步發(fā)情、處于假孕第4d受體母鼠的子宮內(nèi),結(jié)果著床率為77.9%,與在體內(nèi)胚泡的發(fā)育接近,為84.2%,而體外培養(yǎng)未加EGF有胚泡,移植后的著床率只有57.1%。其原因可能是EGF顯著刺激小鼠胚泡滋養(yǎng)層細(xì)胞的外延生長,增加與子宮內(nèi)膜的粘附。Taga[7]1992年的實(shí)驗(yàn)顯示,EGF對(duì)小鼠2細(xì)胞的發(fā)育不表現(xiàn)出明顯的效應(yīng),只在桑椹胚以后,EGF自分泌和旁分泌才對(duì)胚胎的發(fā)育起作用。然而Buyalos[8]發(fā)現(xiàn),將小鼠2細(xì)胞胚胎培養(yǎng)在EGF含量為2~100mg的培養(yǎng)液中,72h后,*擴(kuò)展和正在孵化的胚泡的比例明顯高于對(duì)照組,且EGF的促進(jìn)作用可被抗EGF抗體所阻斷。Terual[9]將小鼠2細(xì)胞胚胎單獨(dú)培養(yǎng)時(shí),EGF可明顯增加胚胎的分化生長速率,證明EGF對(duì)小鼠2細(xì)胞胚胎的生長有促進(jìn)作用。EGF是否作用于早期胚胎取決于胚胎EGF-R的有無及活性,免疫熒光測(cè)定出小鼠未受精卵細(xì)胞和2細(xì)胞胚胎中呈現(xiàn)很弱的EGF-R熒光,4細(xì)胞以后各期,熒光逐漸增強(qiáng)。除滋養(yǎng)層細(xì)胞外,內(nèi)細(xì)胞團(tuán)中也EGF-R的表達(dá),RT-PCR測(cè)出4細(xì)胞后EGF-R mRNA顯著長高,說明從8細(xì)胞開始合成的受體蛋白源自胚胎的mRNA,而受精卵和2細(xì)胞胚胎內(nèi)的mRNA則可能是母源性的[10]。 Merriman[11]將未受精的小鼠卵細(xì)胞在EGF的培養(yǎng)液中進(jìn)行成熟處理,受精后分裂至2細(xì)胞階段的能力高于對(duì)照組,將這些2細(xì)胞胚胎移植人受體假孕小鼠后,著床率為64%~78%,略低于正常著床率89%。Grupen[12]用EGF處理豬的卵細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)能提高進(jìn)行減數(shù)分裂的成熟卵細(xì)胞的比例,源于這些卵細(xì)胞受精后囊胚的形成率比對(duì)照組高,此結(jié)果表明,EGF對(duì)豬卵細(xì)胞的減數(shù)分裂和細(xì)胞質(zhì)成熟具有重要作用。 EGF不僅對(duì)小鼠,而且在多種哺乳動(dòng)物中都表現(xiàn)出對(duì)著床前胚胎發(fā)育具有調(diào)節(jié)作用。Johnson[13]證實(shí)在大鼠妊娠4、5、6d的子宮腺上皮中存在EGF、TGF-α和EGF-R,EGF-R同時(shí)還存在于正在植入的胚胎和子宮基質(zhì)的蛻膜細(xì)胞上。Gharib[4]在綿羊圍著床期滋養(yǎng)層細(xì)胞上也發(fā)現(xiàn)EGF-R存在,其分子量與小鼠EGF-R相同,為170kd,EGF和EGF-R的存在提示EGF參與了調(diào)節(jié)胚胎的發(fā)育。Zhang[15]從著床前的豬胚胎上同樣發(fā)現(xiàn)分子量為170kd的EGF-R,該受體蛋白在有EGF和ATP時(shí)發(fā)生磷酸化。此外,在兔[16]、牛[17,18]、貓[19]、馬[20]等動(dòng)物的滋養(yǎng)層細(xì)胞和子宮內(nèi)膜上都證實(shí)有EGF和EGF-R,EGF能夠刺激體外培養(yǎng)胚胎的卵裂,使之更快發(fā)育至囊胚期。停滯發(fā)育(arrested development)是斑點(diǎn)鼬(一種小型食肉目哺乳動(dòng)物)生殖生理的奇特表現(xiàn),即胚胎著床前要經(jīng)歷180~220d的“休眠”,Paria[21]運(yùn)用放射自顯影技術(shù)顯示,在斑點(diǎn)鼬子宮腺上皮、內(nèi)膜基質(zhì)、肌層和血管上存在EGF結(jié)合位點(diǎn),進(jìn)步用Northern雜交表明,延緩著床和圍著床期間子宮和胚泡上均有類似于小鼠的EGF-R,分子量也為170kd的受體蛋白。用EGF分子誘導(dǎo),僅在胚胎“蘇醒”恢復(fù)發(fā)育時(shí),EGF誘導(dǎo)的蛋白酪氨酸激酶(PTK)的活性才顯著升高,在停滯發(fā)育時(shí)期,PTK活性無變化。這些結(jié)果表明,EGF在斑點(diǎn)鼬的胚胎發(fā)育調(diào)節(jié)中起著重要作用,特別是EGF-R的數(shù)量或功能狀態(tài)可能是胚胎被激活以及著床的先決條件。 三、EGF與著床啟動(dòng) 在正常生理過程中,雌激素的第二次峰值對(duì)于胚胎著床的開始是必需的。Johnson通過切除大鼠垂體,同時(shí)給與孕酮支持建立胚胎延緩著床模型[13],在這個(gè)模型中,由于缺乏雌激素,胚胎無法著床,但當(dāng)給這些大鼠靜脈注射100mgEGF,同時(shí)移植人延緩著床胚胎時(shí),約有73%的大鼠子宮內(nèi)發(fā)現(xiàn)了著床點(diǎn),EGF雖然能夠啟動(dòng)著床,但在體內(nèi)是否參與雌激素的誘導(dǎo)著床作用以及作用方式如何尚不明確。Johnson[22]在另外一個(gè)實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),如果在注射EGF1h前先給與消炎痛(indomethacin,一種前列腺素合成酶的抑制劑),EGF啟動(dòng)著床的作用可被阻斷,但對(duì)雌二醇的作用則無影響,這個(gè)結(jié)果一方面說明EGF、雌二醇啟動(dòng)著床的途徑可能不同;另一方面提示前列腺素參與調(diào)節(jié)著床過程。Tamada[23]測(cè)定了EGF對(duì)大鼠胚泡著床和蛻膜反應(yīng)的影響作用。結(jié)果表明,在延緩著床大鼠的子宮腔內(nèi)注射EGF,所誘導(dǎo)的著床效果與EGF呈劑量依賴關(guān)系,假孕5d的大鼠接受EGF宮腔注射后,蛻膜反應(yīng)增強(qiáng),提示EGF在胚胎著床和蛻膜化過程中可能發(fā)揮重要作用。EGF和雌二醇不同的啟動(dòng)著床途徑在Chatterjee[24]的實(shí)驗(yàn)中得以驗(yàn)證,作者在用提純的雌激素拮抗劑ICI-182780阻斷雌二醇啟動(dòng)著床的效應(yīng)時(shí),卻發(fā)現(xiàn)該拮抗劑并不影響EGF。 四、EGF與胚胎植入 1992年Hofmann[25]應(yīng)用免疫組化方法證實(shí)人胚植人部位EGF和EGF-R,而且報(bào)道中間型滋養(yǎng)層(intermediaet rtophoblast,IT)也EGF和EGF-R分布,從而為EGF在人體早期妊娠胚胎植入過程具有調(diào)節(jié)作用提供了依據(jù)。EGF、EGF-R在滋養(yǎng)層的免疫活性表現(xiàn)呈下列規(guī)律:合體滋養(yǎng)層>中間型滋養(yǎng)層>細(xì)胞滋養(yǎng)層,分布差異的原因尚不明了。 有胚胎粘附、侵蝕、穿透子宮內(nèi)膜過程中,子宮內(nèi)膜細(xì)胞的凋亡涉及一系列蛋白酶的作用,如:細(xì)胞滋養(yǎng)層細(xì)胞(CTB)分泌的基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP),它能消化內(nèi)膜的細(xì)胞外基質(zhì);與之對(duì)抗的是蛻膜產(chǎn)生其抑制劑TIMPs;子宮內(nèi)膜入滋養(yǎng)層還分泌一種調(diào)節(jié)酶劑,即纖溶酶原激活因子(PA,主要是尿激酶型uPA)。Harvey[26]在小鼠著床前和著床期子宮內(nèi)膜中都測(cè)出TIMPs(1,2,3)和uPA受體有轉(zhuǎn)錄,但只在處于植入侵蝕階段的胚胎中才*次測(cè)出MMP-9和uPA的mRNA,原位雜交顯示MMP-9于7.5d時(shí)植入胚胎周圍的滋養(yǎng)層細(xì)胞高表達(dá),而TIMPs則于緊鄰植入胚胎周圍的蛻膜中高表達(dá),TGF-β1刺激TIMPs的產(chǎn)生。uPA主要表達(dá)于外胎盤錐,這樣的表達(dá)方式保證胚胎地植入。Harvey的實(shí)驗(yàn)證明,EGF對(duì)這些酶的活性具有調(diào)節(jié)作用。他將妊娠4d的小鼠胚胎培養(yǎng)在含EGF的培養(yǎng)液中,2d后,其MMP-9和uPA的活性增強(qiáng);白血病抑制因子(LIF)具有同樣效應(yīng),但從第3d起,EGF失去刺激效應(yīng),LIF甚至抑制MMP-9和uPA的生成,此結(jié)果說明EGF與LIF一起參與了植入過程中蛋白激酶表達(dá)正確程序的建立。Miyauchi[27]進(jìn)一步證實(shí),EGF對(duì)uPA釋放的刺激作用,同時(shí)還發(fā)現(xiàn)EGF刺激人體內(nèi)膜細(xì)胞釋放組織型PA(tPA)以及PA的抑制劑PAI-1,EGF對(duì)tPA和PAI-1釋放的刺激作用在有孕酮存在時(shí)得以增強(qiáng),推導(dǎo)EGF同孕酮一樣參與著床,部分地通過調(diào)節(jié)纖溶酶原激活因子/纖溶酶系統(tǒng)來完成內(nèi)膜組織凋亡、重建和細(xì)胞遷移。EGF啟動(dòng)著床的作用被消炎痛阻斷這一現(xiàn)象提示,前列腺素可能是其發(fā)揮作用的環(huán)節(jié)之一,而前列腺素本身又是調(diào)節(jié)著床的重要因素之一,它可直接增加蛻膜細(xì)胞中uPA的轉(zhuǎn)錄和表達(dá),調(diào)節(jié)細(xì)胞外基質(zhì)[28],同時(shí)刺激著床部位內(nèi)膜毛細(xì)血管通透性增加,多種營養(yǎng)物質(zhì)進(jìn)入該部位,使得內(nèi)膜疏松水腫而有利于著床。至于EGF與前列腺素相互作用關(guān)系還有待探明。zui近發(fā)現(xiàn)[29],通過蛋白激酶C途徑磷酸化cAMP應(yīng)答元件結(jié)合蛋白(cAMP response element-binding protein,CREB),EGF能促進(jìn)滋養(yǎng)層細(xì)胞中人絨毛膜促性腺激素-α(hCG-α)基因的轉(zhuǎn)錄,而hCG對(duì)胚胎著床具有十分重要的意義。 胚泡粘附、植入時(shí),同類因子中zui早發(fā)揮直接作用的可能是HB-EGF[30]。表達(dá)于內(nèi)膜上皮的HB-EGF可與細(xì)胞表面的兩個(gè)位點(diǎn)結(jié)合:一是胚泡或滋養(yǎng)層細(xì)胞的EGF-R;二是滋養(yǎng)層細(xì)胞的硫酸乙酰肝素蛋白多糖(HSPG)。小鼠胚泡粘附一般發(fā)生在妊娠第4d晚上10點(diǎn)~11點(diǎn),此前6~7h,HB-EGF開始表達(dá)。體外研究顯示,HB-EGF可使胚泡的EGF-R去磷酸化,從而促進(jìn)胚泡生長、透明帶孵化以及滋養(yǎng)層的擴(kuò)展生長。 五、EGF的調(diào)節(jié) EGF是細(xì)胞生長因子網(wǎng)絡(luò)中眾多成員的一員,其功能既受因子之間、各種激素等活性物質(zhì)的調(diào)節(jié),又有其自身的旁分泌和自分泌調(diào)節(jié),機(jī)制十分復(fù)雜,至今尚未*明了。比較統(tǒng)一的觀點(diǎn)是,EGF主要受到雌激素的調(diào)控。Kleinstein[31]用放射性配體結(jié)合法在兔和人的研究中發(fā)現(xiàn),雌激素能夠促進(jìn)植入前子宮內(nèi)膜表達(dá)EGF-R,雌激素拮抗劑可以阻斷這種誘導(dǎo)效應(yīng),而孕酮并不影響標(biāo)記EGF結(jié)合到內(nèi)膜表面。不僅如此,小鼠胚泡中EGF-R基因的表達(dá)與母體雌激素狀態(tài)密切相關(guān),Paria[32]在小鼠妊娠第4d時(shí)切除其卵巢,以后每天(5~7d)注射孕酮,從而建立起延緩著床模型,第7d時(shí),注射雌二醇,結(jié)果激活胚泡并發(fā)生著床。原位雜交技術(shù)可從正常妊娠D4胚泡中測(cè)出EGF-R的mRNA,但在休眠胚泡中檢測(cè)不出。休眠胚泡在注射雌二醇8h后被激活,用半定量RT-PCR法測(cè)定,EGF-R的mRNA拷貝數(shù)增加了8倍。以上實(shí)驗(yàn)表明,雌激素對(duì)EGF和EGF-R的表達(dá)具有重要的調(diào)節(jié)作用。至于雌激素拮抗劑ICI-182780不影響EGF啟動(dòng)著床的原因,分析是雌激素與EGF發(fā)揮調(diào)節(jié)胚胎著床的作用層次和/或途徑不一所致,雌激素可能通過多種途徑參與調(diào)節(jié)胚胎著床,而EGF可能是這些途徑中比較重要的一環(huán)。 EGF主要表達(dá)于子宮內(nèi)膜,而EGF-R在內(nèi)膜和胚泡(包括滋養(yǎng)層細(xì)胞)均有表達(dá),但是在小鼠,EGF-R主要表達(dá)于子宮內(nèi)膜的基質(zhì)和肌層,在內(nèi)膜上皮中,RT-PCR法未測(cè)到完整的mRNA分子,只測(cè)出轉(zhuǎn)錄分子的片段,這些片段不能翻譯出有功能的EGF-R,而在著床前的囊胚中,完整的EGF-RmRNA十分豐富,由此提示,在胚胎——子宮內(nèi)膜相互作用中,包括EGF、HB-EGF、TGF-α等EGF家庭成員的作用對(duì)象是胚泡,而不是子宮內(nèi)膜上皮。 六、其它 Amphiregulin(Ar)、Cripto等生長因子與著床關(guān)系的研究始于近幾年,報(bào)道的文獻(xiàn)十分有限。Johnson[34]從未受精的小鼠卵細(xì)胞和早期胚胎未測(cè)出Ar的存在。Tsark[35]用多克隆抗Ar抗體和間接免疫熒光技術(shù)從桑椹胚和囊胚中測(cè)到Ar,Ar分布于胚胎細(xì)胞的胞質(zhì)和核內(nèi),具有使胚胎加快進(jìn)入囊胚階段,同時(shí)增加胚胎的細(xì)胞數(shù)目的功能,TGF-α也可提高囊胚的形成,但不影響細(xì)胞數(shù)目,結(jié)果提示Ar以自分泌方式作用于小鼠著床前胚胎,其刺激細(xì)胞增殖、促進(jìn)囊胚盡早形成的能力大于TGF-α。同樣,Cripto的轉(zhuǎn)錄只在囊胚期才見到[35],主要定位表達(dá)于胚胎的外胚層和隨后快速生長的外胎盤錐。Xu[36]進(jìn)一步發(fā)現(xiàn),Cripto從囊胚期開始,逐漸表達(dá)于原條和心臟發(fā)生的部位,它對(duì)具有收縮性的心肌細(xì)胞分裂和分化的效應(yīng)。Reese[5]證實(shí),NDF表達(dá)于植入胚胎周圍的子宮內(nèi)膜中,在延緩著床的小鼠模型中,NDF不表達(dá),而當(dāng)注射雌激素、激活胚胎著床時(shí),NDF很快恢復(fù)表達(dá)功能,此結(jié)果提示,NDF可能參與胚胎與內(nèi)膜復(fù)雜的信號(hào)傳遞途徑,對(duì)胚胎的激活是必要的。 七、結(jié)束語 EGF雖然在著床過程中表現(xiàn)出多種形式的功能,但就調(diào)節(jié)著床的因素而言,EGF的功能并不如雌激素、孕激素,甚至LIF、IL-1等因子更重要,研究EGF與著床的關(guān)系只是闡明胚胎著床機(jī)制中很小的組成部分,至于EGF在體內(nèi)調(diào)節(jié)著床的完整功能尚有待人們?nèi)パ芯刻接憽?/div> *重慶醫(yī)科大學(xué)醫(yī)學(xué)超聲工程研究所 參考文獻(xiàn) 1 王宏.國外醫(yī)學(xué)免疫學(xué)分冊(cè),1995;3:146-148 2 Murray JF,Dowing JA,Evans c et al. J Endocrinol,1993;137(2):253-264 3 Das SK,Tsukamura H,Paria bC et al. Endocrinology,1994;134:971-981 4 Hoelting T,Siperstein aE,Clark OH et al. J Clin Endocrinol Metab,1994;79:401-408 5 Reese J,Brown N,Das SK et al. Biol Reprod,1998;58(3):719-727 6 Morita Y, Tsutsumi o,Taketani Y.Am J Obstet Gynecol,1994;171(2):406-409 7 Taga M.Nippon Sanka fujinka Zasshi,1992;44(8):938-948 8 Buyalos RP,Cai X.J Assist reprod Genet,1994;11(1):33-37 9 Teruel M,Smith R.Acta physiol Pharmacol Latinoam,1997;47(2):87-96 10 Wiley LM,Wu JX,Harari I et al. Dev Biol,1992;149(2):247-260 11 Merriman JA,Whittingham dG,Carroll J. Hum Repord,1998;13(3):690-695 12 Grupen CG,Nagashima h,Nottle MB.Reprod Fertil Dev,1997;9(6):571-575 13 Johnson DC,Chatterjee s.Placenta,1993;14(4):429-438 14 Gharib HN,Chene n,Guillomot M et al. J Reprod Fertil,1993;98(2):385-392 15 Zhang Y,Paria BC,Dey SK et al. Dev Biol,1992;151(2):617-621 16 Hofmann GE,Anderson tL.Am J Obstet Gynecol,1990;161:837-841 17 Lonergan P,Carolan C,Van lA et al. Biol Reprod,1996;54(4):1420-1429 18 Rieger D,Luciano aM,Modina S et al.J Reprod Fertil,1998;112(1):123-130 19 Boomsma RA,Mavrogianis pA,Verhage HG.Histochem J,1997;29(6):495-504 20 Lennard SN,Gerstenberg c,Allen WR et al. J Reprod Fertil,1998;112(1):49-57 21 Paria BC,Das SK,Mead RA et al. Biol Reprod,1994;51(2):205-213 22 Johnson DC,Chatterjee s.J Reprod Fertil,1993;99(2):557-559 23 Tamada H,Kai Y,Mori j.Prostaglandins,1994;47(6):467-475 24 Chatterjee S,Johnson dC.Life Sci,1993;52(21):1625-1630 25 Hofmann GE,Drews mR,Scott RT et al. J Clin Endocrinol Metab,1992;74:981-988 26 Harvey MB,Leco kJ,Arcellana-Panlilio MY et al.Development,1995;121(4):1005-1014 27 Miyauchi A,Momoeda m,Nakabayashi M et al. Hum Reprod,1995;10(12):3284-3288 28 Zhang X,Shu MA,Harrey MB et al.Biol Reprod,1996;54(5):1052-1058 29 Matsumoto K,Yamamoto t,Kuraohi H et al. J Biol Chem.1998;273(14):7800-7806 30 Das SK,Wang XN,Paria BC et al. Development,1994;120(5):1071-1083 31 Kleinstein J, Westermann w,Mennenga K et al. Am J Reprod Immunol,1993;30(2-3):58-62 32 Paria BC,Das SK,Andrews gK et al. Proc Natl Acad Sci USA,1993;90(1):55-59 33 Tong BJ,Das sK,Threadgill D et al. Endocrinology,1996;137(4):1492-1496 34 Johnson SE,Rothstein jL,Knowles BB.Dev Dyn,1994;201(3):261-226 35 Tsark EC,Adamson eD,Withers GE et al. Mol Reprod Dev,1997;47(3):271-283 36 Xu C,Liguori G,Adamson eD et al. Dev Biol,1998;196(2):237-247 |